標簽：熒光素 細胞轉(zhuǎn)染 熒光強度   熒光檢測 啟動子 

  螢火蟲可以在螢光素酶的存在下將螢光素轉(zhuǎn)化為氧化螢光素以發(fā)光。利用熒光素酶的較常見的科學測定是報告基因測定，其中可以通過測量來自熒光素酶反應的光信號來跟蹤轉(zhuǎn)錄激活或抑制。建議使用雙熒光素酶系統(tǒng)，其中發(fā)生二次生物發(fā)光反應。第二個信號由另一個分子發(fā)出。最常見的是由也可以生物發(fā)光的海腎基因編碼（一些質(zhì)粒已經(jīng)包含海腎和螢光素酶基因，例如 Promega 的 pmirGLO）。這允許您將熒光素酶表達標準化為對照并測量您的相對轉(zhuǎn)染效率。

熒光素酶檢測過程中的注意事項：
1.信號問題：無信號或低信號。
    這可能歸于轉(zhuǎn)染問題。我會先檢查你的質(zhì)粒的質(zhì)量。確保您具有轉(zhuǎn)染質(zhì)量的 DNA正常的小量制備柱通常會攜帶更多的內(nèi)毒素和鹽，這些內(nèi)毒素和鹽可能會抑制您的細胞轉(zhuǎn)染或?qū)е录毎劳觥?/span>
    有些細胞難以轉(zhuǎn)染。建議對使用的每個細胞系，對 DNA 和轉(zhuǎn)染試劑的量進行滴定實驗。顯然，作為您的標準化對照，使用的海腎質(zhì)粒的量應始終保持不變。
2.DNA 量：通常您要評估對照質(zhì)粒與實驗質(zhì)粒，由于添加了實驗序列，這些質(zhì)粒的大小可能不同。即使您將相同量的 DNA 轉(zhuǎn)染到每個孔中，每個孔獲得的 DNA 總量也可能不同，因為您轉(zhuǎn)染的摩爾比不同。
例如：
來自 2000 bp 質(zhì)粒的 1 µg DNA 是 0.76 pmoles DNA
來自 3000 bp 質(zhì)粒的 1 µg DNA 是 0.51 pmoles DNA。
較大的質(zhì)粒每克含有較少的 DNA 摩爾數(shù)！因此，您需要轉(zhuǎn)染更大質(zhì)粒的更多 DNA，才能轉(zhuǎn)染與小質(zhì)粒相同數(shù)量的 DNA。為了使轉(zhuǎn)染的 DNA 量標準化，許多人使用“填充"DNA，例如 pUC19 質(zhì)粒（在哺乳動物細胞中沒有功能）。
例如，要測試不同數(shù)量的熒光素酶質(zhì)粒但保持總 DNA 相同，您可以執(zhí)行以下操作：

3.時間：您可能錯過了可視化效果的窗口。細胞通常在轉(zhuǎn)染后 24 – 48 小時進行檢測，但這在很大程度上取決于細胞機器表達您感興趣的基因所需的時間?？梢砸詢?yōu)化轉(zhuǎn)染后孵育時間的時間過程來決定檢測細胞的合適時間點。
4.信號太強：飽和度：雖然高的信號可能被視為陽性，但您還需要確保您處于檢測和光度計的動態(tài)范圍內(nèi)，并且不會使信號飽和。如果您有較高的值，則您可能使用了過多的 DNA。
啟動子強度：此外，您可能需要更改質(zhì)粒。如果您使用非常強的啟動子，例如 CMV 或 SV40，這也可能會使您的信號飽和。某些應用（例如，如果您正在測量 miRNA 阻斷結合位點的能力）需要較弱的啟動子，因為您所看到的效果可能比轉(zhuǎn)錄阻遏元件的效果非常輕微。

重復之間的差異：
同一實驗的孔之間的差異表現(xiàn)在：
1.移液：孔獲得的液體量的微小變化會極大地影響轉(zhuǎn)染和熒光素酶測定的執(zhí)行方式。熒光素酶檢測對此較為敏感！建議為您的轉(zhuǎn)染反應制作預混液（即使它只是用于重復的 3 個孔）。對于每個組合，您應該始終至少有 2 次重復，最好是 3 次。
2.酶標板：另一個問題可能是你的酶標板。來自相鄰孔的背景發(fā)光會干擾您的實驗。建議您在白壁或不透明板中進行熒光素酶檢測。但是，您無法在白色孔板中看到您的細胞，因為它們是*白色的！
3.實驗之間的變異（生物變異）
    應該重復多次實驗，以確保您測量的效果是可重復的，因此有可能與生物學相關。然而，我們注意到細胞進行轉(zhuǎn)染的能力在很大程度上取決于它們的匯合度，尤其是貼壁細胞。轉(zhuǎn)染依賴于細胞表面接觸，過度融合的細胞可能轉(zhuǎn)染效率較低。不要假設如果您接種相同數(shù)量的細胞，它們每次都會以相同的方式沉淀在板的底部！從而致使細胞結塊。嚴重地影響您細胞的轉(zhuǎn)染效率和熒光素酶的檢測結果。